PRACTICA 16: COPROCULTIVO
COPROCULTIVO

RESULTADOS
MAC CONKEY : El color antes de incubar es rosado
Las colonias lactosa + son de color rojo
Las colonias lactosa - son incoloras
Las colonias con ácido sulfhídrico no producen cambios de color
SS: El color antes de incubar es rosado, ligeramente amarillo
Las colonias lactosa + son de color rojo
Las colonias lactosa - son incoloras
Las colonias con ácido sulfhídrico posen color negro
HEKTOEN: El color antes de incubar es verde claro
Las colonias lactosa + son de color anaranjado - salmón
Las colonias lactosa - son de color verde azulado
Las colonias con ácido sulfhídrico poseen color negro
XLD: El color antes de incubar es rojo
Las colonias lactosa + son de color amarillas
Las colonias lactosa - son de color rojo
Las colonias con ácido sulfhídirco poseen color negro
FUNDAMENTO
Consiste en el cultivo de materia fecal. Es un método de diagnostico microbilológico
que permite identificar diferentes organismos causantes de enfermedades gastrointestinales.
Es indicado para el diagnóstico de ciertas infecciones del aparato gastrointestinal,
especialmente aquellas infecciones provocadas por bacterias. Se utiliza para estudiar
casos de diarrea severa, persistente o recurrente sin causas conocidas, y en caso de
diarreas asociadas al consumo de antibióticos.
Los medios de cultivo más utilizados son:
Agar S-S: Selectivo para Salmonella y Shigella.
Agar sangre: Para Streptococcus.
Agar Hektoen: Para Salmonella y Shigella.
Caldo selenito: Enriquecimiento de Salmonella
Agar Yersinia: Para yersinia.
Agar Skirrow: Para Campylobacter.
Medio Chapman: Si se observan Estafilococos.
XLD: Selectivo para Salmonella y Shigella.
TCBS: Para V. Cholerae.
PROCEDIMIENTO
MCK, H-K, S-S Y, AGAR CHOCOLATE Y CALDO SELENITO
Mezclamos varios microorganismos en 5 mL de SSE e hicimos una suspensión bacteriana.
(En nuestro caso teníamos Proteus y Serratia).
Empapamos un hisopo en la suspensión.
Sembramos cada placa haciendo una estría, desde un borde hasta la mitad de la placa
A continuación con un asa de siembra estéril, se siembra por agotamiento de estrías en el
resto de la placa.
Cortamos lo sobrante del hisopo y cerramos.
Metemos las placas y el caldo a incubar a 37ºC durante un día.
Al día siguiente, se realiza una resiembra del caldo en agar S-S o HK. Para ello, con el hisopo se toma una cantidad del caldo y se siembra por agotamiento de estrías.
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