PRACTICA 21: TINCIÓN SIMPLE DE HONGOS

TINCIÓN SIMPLE DE HONGOS: EN FRESCO Y CON FISO

OBJETIVO

Visualizar las estructuras de los hongos tras aplicarle colorante

PROCEDIMIENTO

EN FRESCO

Depositamos una gota de colorante en un porta. El colorante puede ser azul de Lactofenol o Safranina.

Con un asa de siembra estéril, cogemos una muestra de hongo de una mandarina y/o un tomate.

Depositamos la muestra sobre la gota de colorante y realizamos una extensión.
Cubrimos la extensión con un cubreobjetos y visualizamos al microscopio.









Observamos resultados. RESULTADOS



EN FISO 



Adherimos una cinta adhesiva transparente (tipo Fiso) sobre la colonia para tomar una porción del micelio.
Colocamos una gota de azul de lactofenol sobre el portaobjetos
Pegamos un extremo de la cinta adhesiva cargada con el micelio en el extremo del porta


  
Presionamos la cinta sobre el colorante para permitir que le micelio empape en la solución y entonces cuidadosamente pegamos el extremo de la cinta adhesiva al porta con cuidado de que no se formen burbujas de aire
Observamos al microscopio


RESULTADOS













Comentarios

Publicar un comentario

Entradas populares de este blog

PRACTICA 3: TECNICAS DE SIEMBRA Y AISLAMIENTO

Imagen
TECNICAS DE SIEMBRA Y AISLAMIENTO  MATERIAL: Mechero bunsen Asa o hilo de platino Cultivo bacterianos o muestras Medios de cultivo distribuidos en placas o en tubos.  Gradillas para tubos de ensayo SIEMBRA EN PLACA PARA AISLAMIENTO Flamear el asa de siembre y enfriarla en las proximidades del mechero bunsen. Tomar de una muestra de microorganismos, de un medio que contengas colonias. Intentar seleccionar las colonias que estén aisladas, y extenderla por la toda la superficie de la placa de Petri. Esta extensión debe hacerse de manera suave, sin apretar demasiado para no dañar el agar, y con movimientos de zig-zag, haciendo estrías muy juntas. Flamear siempre después de terminar la extensión por la placa o por el tubo. La forma que practicamos de siembra en las placas, se llama siembra por agotamiento de estrias. MUY IMPORTANTE flamear el asa, para arrastrar en cada siembra. Incubar la placa en posición invertida en la estufa a l...
Leer más

PRACTICA 1: ESTERILIZACION Y MANEJO DE ASAS, TAPONES Y TUBOS

Imagen
ESTERILIZACION DEL ASA DE PT Y BOCA  DE TUBOS. MANEJO DE ASAS, TAPONES Y TUBOS MATERIAL Asa de siembra Tubo de siembra Tapón de tubo de siembra Mechero bunsen TECNICA Sujetamos el tubo con dos dedos de la mano izquierda, de manera que podamos ver el contenido del tubo. Con el dedo meñique de la mano derecha quitamos el tapón. Sujetar el asa con los dedos pulgar, indice y corazon de la mano derecha. Flamear el asa, introduciendo la  punta en el cono frio de la llama del  mechero en posición vertical y luego ir levantándola hasta que  toda al rojo vivo. Pasar el asa por la llama en un ángulo de 60º con l a vertical. Flamear todo el material adyacente a el asa. Esto se evita utilizando asas estériles. Trabajar a una distancia de 15-20 cm alrededor del mechero. Quitar el tapón del tubo siempre con la mano derecha, utilizando lo...
Leer más

PRASCTICA 19: TEST DE FILAMENTACION

Imagen
TEST DE FILAMENTACIÓN  FUNDAMENTO El test de filamentación consiste en la inoculación de la levadura en suero, incubación durante 3 horas a 37ºC y observación al microscopio del crecimiento (positivo) o no (negativo) de los tubos germinales típicos de   C. albicans.  PROCEDIMIENTO En un tubo de hemólisis añadimos 0.5 ml de suero. Con un asa estéril tomamos una colonia sospechosa de C. albicans. Incubamos durante 3 horas en aerobiosis a 37ºC. Depositamos una gota de la suspensión en el portaobjetos. Cubrimos con cubreobjetos. Observamos al microscopio. RESULTADOS Positivo: C uando se observan prolongaciones de la célula madre sin constricción en su punto de origen (tubos germinales). En este caso se trata de C. albicans. Si es negativo se trata de otras levaduras. En este caso hay que identificarlas mediante: API o VITEX
Leer más